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篇1
资料与方法
样本来源:健康人及临床患者新鲜抗凝全血(EDTA-K2,抗凝真空负压采血管采集)。
方法:仪器校准:用校准参考仪器MEK7222-K型血细胞分析仪之进口原装配套校准品对其进行校准,再在该仪器上将健康人新鲜抗凝全血连续测定11次,弃去第1次结果,计算其余10次各指标之均值作为新鲜血参考定值。用此定值新鲜血代替校准品对BC-5500及ABX-60两台血细胞分析仪进行校准(样本采集到校准完成4小时内结束)。
比对试验:选取临床患者高、中、低值5份新鲜抗凝全血在上述校准后的各台仪器上与其他样本一同测定(测平行样取均值)。以MEK7222-K型血细胞分析仪所测结果为标准,分别计算BC-5500及ABX-60两台血细胞分析仪所测结果之偏差(CV%)。
结 果
用新鲜血校准的BC-5500、ABX-60两台血细胞分析仪之检测结果与校准参考仪器MEK7222-K分析仪之检测结果配对比较t检验,均为P>0.05,表明差别无显著性意义;RDW最大CV值为3.8%,PLT最大CV值为6.9%,MPV最大CV值为14.6%,其余各项指标CV值均
讨 论
血细胞分析是临床最常用的实验室检测指标,其结果的准确与否直接影响到多种疾病的诊疗。全自动血细胞分析仪由于计数准确,精密度高,操作简便、快速,因而发展迅速,已逐渐取代传统手工方法,成为临床实验室的主要检测手段。但由于生产血细胞分析仪的厂家多,各自使用的测定原理和方法不尽相同,导致其测定结果及参考范围有所差异。国内各医院使用不同厂家和型号的血细胞分析仪已成为普遍现象,致使分析结果呈现不同程度的差异,给临床跟踪观察与对比带来困难[1]。
血细胞分析结果只有直接或间接地溯源至参考方法,才能保证检测结果的正确性和不同仪器间结果的可比性[2]。血细胞分析仪校准品是权威部门认可的标准物质,只能用于与之配套的同一品牌型号的仪器,由于其价格昂贵、有效期短、进口入关手续复杂而不能及时获得等问题,使其难以在实验室推广。
所谓自动血细胞分析仪实际上就是一台比较器,它将实测数据与校准数据进行比较,继而得出检测标本的分析结果。由此可见,校准物在仪器测定结果的准确是否上起到决定性作用[3]。最好的校准品是经ICSH推荐的参考方法定值的新鲜人体血液:①氰化高铁血红蛋白法测定血红蛋白(HGB)。②微量红细胞压积法测定红细胞比容(HCT)。微量计数板手工计数RBC和WBC。③相差显微镜计数血小板,该新鲜血适用于各种型号仪器的校准。有报道可购买一台性能最佳血细胞分析仪之配套校准品校准该仪器,再以该仪器作为校准参考仪器取得新鲜血各项参数用于其他多台仪器的校准[4]。上述比对结果显示:用新鲜血校准的BC-5500及ABX-60两台血细胞分析仪与校准参考仪器MEK7222-K分析仪各参数间进行配对资料t检验,均为P>0.05,表明差别无显著性意义;五项基础指标之CV值均小于卫生部临检中心允许的可接受范围:尤以WBC、RBC、HGB、HCT四项指标的符合性最好。因EDTA-K 2抗凝血中,血小板体积不稳定,随时间延长而增大,可能是导致PLT、MPV偏差较大的主要原因[5]。
实验结果证明,用配套校准品校准一台性能最佳血细胞分析仪,再用新鲜血在该仪器上取得参数后去校准其他多台分析仪可取得满意结果,该方法既简便易行又经济实用。
参考文献
1 彭明婷,谷小林,等.不同方法校准血液分析仪结果比较.中华检验医学杂志,2000,23(1):35-37.
2 叶应妩,王毓三,申子瑜,等.全国临床检验操作规程.南京:东南出版社,2006:47-81.
篇2
1.1 仪器:采用的仪器是日本Sysmex公司生产的KX-21型全自动血细胞分析仪。
1.2 试剂 ① 仪器用的稀释液、清洗液、溶血剂均由日本Sysmex公司提供。② 显微镜计数用的血小板稀释液按《全国临床检验操作规程》（第二版）配制，冰箱保存。 ③EDTA-K2抗凝剂
1.3 标本来源 选自2008年1月-2008年12月本院门诊及住院的血小板结果异常的血标本共207例，另挑选血小板结果正常的血100作对照。
1.4 用EDTA-K2抗凝全血2ml，充分混匀后，2小时内KX-21型全自动血细胞分析仪检测，取血小板检测结果异常的血标本，同时用显微镜手工计数，另取血小板检测结果正常的血标本100例同时用显微镜手工计数，比较两法结果。
2 结果
血小板少于100×109／L的血标本121例，为A组；血小板大于300×109／L的血标本86例，为B组；lind板在100~300×109／L的血标本100例，为C组，其两法测定结果如表1所示。
3 讨论
3.1 在Sysmex X-21型全自动血细胞分析仪检测中，由于红细胞和血小板的计数是在同一通道中进行，且它们之间仅以体积大小来区别，因此，血小板的计数易受小红细胞数量或红细胞碎片的影响，由于血液中小红细胞的数量远大于血小板数量，即使有少量的小红细胞混入血小板计数范围内，也会对血小板计数造成很大的影响。在血小板直方图右侧下降后继而抬高呈驼峰样改变，血片油镜检查显示红细胞较小或红细胞碎片较多，两种方法血小板计数结果比较，差异有统计学意义（P＜0.01）.
3.2 由于血小板的特点易于粘附、聚集。李永红等认为采血是否顺利是造成血小板偏低的的一个重要原因。采血过程中因操作缓慢，穿刺不顺且组织受损后，组织凝血因子易混入血标本，混匀不及时等均可促成血小板聚集，从而产生肉眼看不见的小凝块，这是血细胞分析仪测定血小板结果偏低的常见原因之一。这时血片镜检可见血小板聚集成堆。遇到这种情况应重新采血测定。
3.3 某些血液病可造成血小板数真正减少，如骨髓巨核细胞生成不良（如障）；血小板破坏增加（如DIC、IPT）;血小板分布异常（如脾大）等。
3.4 标本放置时间过长、试剂质量、地线、电源和药物等因素均能对血小板的计数造成一定程度的影响，因此检测过程中应尽可能排除各种因素的干扰，以使血小板计数可靠，为临床诊断治疗提供有参考意义的数据。
参考文献
［1］ 赵红燕.血液细胞仪测定血小板计数结果的分析.上海医学检验杂志，1998.1.3（2）：27
［2］ 陈梦珍。血细胞分析仪测定血小板影响因素的探讨。江西医学学报，2005,23（3）:243-244
［3］ 詹灵凌，秦雪、林发全等。血细胞分析仪计数血小板的影响因素分析与纠正，广西医科大学学报，2004.21（5）:763-764。
篇3
我院现有两台血细胞分析仪，它们分别在门诊检验室及住院部检验室，为了防止在实际临床的测定中对校准物的定值、仪器校准和仪器使用中的漂移等各种因素导致同一患者的血液先后在不同仪器测定结果存在差异，所以特别对我院两台血细胞分析仪进行比对。
1 资料及方法
1.1 一般资料:这两台血细胞分析仪均为CELLDYN 1700全自动血细胞分析仪及统一使用原厂配套试剂，以住院部检验室使用的CELLDYN 1700全自动血细胞分析仪为比对仪器，门诊血液室使用的CELLDYN 1700全自动血细胞分析仪为试验仪器与其进行比对。
1.2 方法:通过重复性的试验用患者新鲜血液标本分别在两台仪器进行连续性的测定10次，来计算其精密度；比对试验每日随机选取8份新鲜血，先后用两台仪器测定WBC、RBC、HB、HCT、PLT 5项参数，其中每份测定两次，取其平均值，连续测定7 d［1］；试验仪器(X)测定范围的检验：X的分布范围是否合适，可用相关系数(r)进行估计，r≥0.975则为范围合适，直线回归统计的斜率和截距可靠；重复试验评价。
1.3 统计学方法:通过SPSS 10.0进行计算得出其相关系数、回归方程及CV值。
2 结果
2.1 比对仪器各测定项目重复性试验结果均符合要求。试验仪器重复性试验结果只有PLT结果达到要求，其余项目均超出要求。结果见表1。
2.2 各检验数据可靠，r均＞0.975。两台仪器的相关性见表2。
3 讨论
通过试验，我们认为如果有使用两台或两台以上同一型号的仪器时，即使统一使用配套试剂，但在日常工作中可能操作及保养情况存在差异，往往也会导致检验结果出现偏差。根据目前，同一检验科使用两台或两台以上的血细胞计数仪相当普遍，通过 ISO 15189临床实验室质量保证之内审要求在同一实验室使用2种以上型号的血液分析仪时，应当进行必要的性能校准，建立不同实验室间的比对制度。两台仪器在所检测的各个项目的各个浓度对比过程中，均存在较好的相关性，预期偏倚均在可接受的范围内［2］。通过试验发现，试验仪器重复性较差，只有PLT检测结果符合要求，且比对试验中PLT项目不接受，与比对仪器检测结果存在一定的偏差。所以在使用两台或两台以上不同型号的血细胞计数仪时，都普遍认为因仪器检测系统的不一致性，不同型号仪器应该定期进行比对试验，以保证相互检验结果的可比性［3，4］。所以，在使用两台或两台以上同型号血细胞分析仪时，除使用统一的配套试剂，在对仪器进行定标、校准、保养及维护的时间应同时进行，操作人员也应统一培训，保证操作的正确性，同时应建立比对制度，定期对使用仪器进行比对，确保检验结果的可比性。
参考文献
[1] 丛玉隆.现代血细胞分析技术与临床［M］.北京：人民军医出版社，2005：96-118
［2］ 冯仁丰．临床检验管理技术基础［M］．上海：上海科学文献出版社，2003：5-8
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血细胞分析是临床最常用的实验室检测指标,其结果的准确与否直接影响到多种疾病的诊疗。全自动血细胞分析仪由于计数准确,精密度高,操作简便、快速,因而发展迅速,已逐渐取代传统手工方法,成为临床实验室的主要检测手段。但由于生产血细胞分析仪的厂家多,各自使用的测定原理和方法不尽相同,导致其测定结果及参考范围有所差异。各医院使用不同厂家和型号的血细胞分析仪已成为普遍现象,致使分析结果呈现不同程度的差异,给临床跟踪观察与对比带来困难[1]。
根据《医疗机构临床实验室管理办法》的规定,掌握本室内机台血细胞分析仪结果的可比性和可靠性,保证本室内检测结果的一致性。本文对本室内的两台(贝克曼库尔特 HL-750和SysmexXH-2100)不同厂家.不同型号的血细胞分析仪的结果进行了比对,两台血细胞分析仪性能稳定,使用配套的校准品.质控品和试。每日有室内质控血球检测,对两台血细胞分析仪测定的WBC.RBC.Hb.HCT.PLT结果进行比对试验,结果报道如下:
1 材料与方法
1.1 材料
1.1.1 仪器:血细胞分析仪两台,分别是贝克曼库尔特公司的HL-750血细胞分析仪和Sysmex公司的XH-2100血细胞分析仪。
1.1.2 主要试剂:HL-750血细胞分析仪试剂.校准品.质控品由美国贝克曼库尔特公司提供;XH-2100血细胞分析仪试剂.校准品.质控品由希思美康公司提供的Sysmex产品。
1.1.3 标本:临床患者新鲜静脉抗凝血。抗凝剂为EDTA-k2,采血管为奥地利格雷娜公司的真空采血管。
1.2 方法
1.2.1 室内质控:各台血细胞分析仪每天用全血质控物测定,其中包括WBC、RBC、Hb、HCT、PLT、MCV结果为室内质控项目,结果在控制允许范围内。
1.2.2 比对实验:采取患者新鲜静脉血标本,每日选取10例,其中包括高.中.低值血细胞标本,分别进行WBC、RBC、Hb、HCT、PLT、MCV检测,重复测定2次,取平均值,供测定5天,实验在2小时内完成。
1.2.3 数据处理:各种数据使用MicrosoftExcel 工具中函数计算;方法:在Excel 方格中分别输入两台血细胞分析仪的WBC、RBC、Hb、HCT、PLT、MCV 数据,计算两组数据的CV值,相关系数.回归方程。
2 结果
2.1 2台血细胞分析仪每日室内质控,共计测定30天,CV值见表1。
3 讨论
血细胞分析仪因为计数结果准确、精度高,操作简便、快速,因而发展迅速,成为临床实验室地主要检测手段。在国内大中型医院,同一实验室使用不同厂家和型号的血细胞计数仪已成为较普遍现象,即使各仪器配套质控物都在允许范围内,也会出现同一标本用不同地仪器分析,出现测定值的差异,给评估和解释结果带来一定困难,并不时地给疾病地诊断、治疗及预后带来误解和不良地影响,又增加了经济成本[2]。
通过新鲜全血对2台仪器测定结果比对表明:2台仪器地相关性较好,尤其WBC、RBC、HGB、3个项目结果相关密切(r均>0.975),结果间没有明显差异,PLT结果相关性也很好,NCCLS推荐地多台血细胞分析仪计数PLT地CV值可为25%。其中C-5d,C-2d和CD-1700,3台仪器相关性好,BC-3000略差一些。结果间地比对是了解仪器之间测定结果地可比性和可靠性,保证实验室内结果地一致性。以上结果表明:4台血细胞分析仪具有很好地可比性,可用新鲜全血替代配套质控物每天对4台血细胞分析仪进行质控。
各台血液分析仪各项检测指标的结果稳定、精密度好,CV值均
参考文献
[1] 彭明婷,谷小林,等.不同方法校准血液分析仪结果比较.中华检验医学杂志,2000,23(1):35-37
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1.1仪器
深圳迈瑞公司生产的BC-5500血液分析仪。
1.2试剂
BC-5500专用配套试剂（溶血剂、稀释液、清洗液）。
1.3其他
校准物与质控液，全血校准液（由深圳迈瑞公司提供），全血质控物（由青海省临检中心提供）。
1.4方法
1.4.1按仪器维护保养要求，对仪器进行全面的维护，经常保持微孔的清洁，以保证BC-500在正常条件下批内重复测定变异数（RCV）在规定范围内，每次实验前血液分析仪用全血校准物校准仪器后，严格按仪器操作步骤进行测试。
1.4.2用含EDTA-K抗凝管，采集120例健康人静脉血2ml，轻轻混匀后，立即在血液分析仪BC-500上测定3次，然后分别于5、10、20、30、60min各测3次，并用全血质控物质同步监测仪器，分别计算其均值，按时间分组，分别利用多样本均数间显著性检验与配对t检验进行统计学分析。
2.结果
2.1标本自身因素的影响
由于采血过程不顺利，过分挤压或未充分与抗凝剂混匀等因素人为造成血小板的凝集，是造成血小板计数不准确的首要原因。
2.2标本放置时间的影响
WBC在采血后0―30min内随时间延长其数量不规则递减，组与组之间差异有显著性（P
2.3血小板聚集分可逆聚集和不可逆聚集
当新鲜静脉血加入EDTA―K2：抗凝瓶混匀后血小板即发生聚集反应，此时立即进行全血细胞测定，可逆聚集的血小板还没有解聚，会造成全血细胞分析结果误差。白细胞不同程度假性升高，直方图的小细胞群会出现一个很高的截距，血小板不同程度的假性降低，直方图就会出现锯齿波或尾部抬高。但抗凝血静置30min后，再进行测定，即可消除上述假性结果。100例静脉血放置不同时间各参数的均值比较可看出60min与30min测定值差异无显著性（P>0.05），30min与20min测定值差异有显著性（P
3.讨论
BC-5500型血细胞分析仪计数血小板的原理是直接计数2―20fl范围内的血小板，根据正态分布理论，用电子拟合线拟合0―70fl范围内的血小板数量作最终报告结果，具有双曲线的血小板直方图是它的标准结果，只具有单曲线的血小板直方图，只要成正态对数分布，曲线在20fl范围内有明显的主峰，其仪器计数法与显微镜计数法较一致，与临床基本吻合[1]。血小板膜分内膜和外膜，外膜围绕胞质形成浆膜，并延伸到胞质内部并折叠形成开放微小管系统，它是血小板摄取和释放的通道。质膜内侧附着许多微丝，其主要成分为肌动蛋白的肌凝蛋白，与微管环周束共同支持伪足的形成。当新鲜静脉血离体加入EDTA―K抗凝瓶内，管壁周围的全血外环境及温度发生改变，使血小板形态发生变化[2]。由于血小板发生聚集，在阻抗法做血小板计数时，聚集体所产生的脉冲大于仪器预设的单一血小板脉冲值，因而就不会计数血小板结果内，从而使血小板数量减少。
故血小板聚集的原因可能有：
（1）抗凝剂EDTA―K2：能使血小板形态发生改变。由盘状变成球状，从而使可逆聚集血小板的伪足回缩到血小板胞质内，血小板相互缠绕的伪足就可解除。
（2）可逆聚集的血小板由于形态有所改变及伪足的形成，增大了血小板表面积，其表面负电荷相应增大，同性电荷的排斥力也就相应增强。
（3）温度升高，分子运动速度越快，温度对可逆聚集血小板解聚的影响尤其在用预稀释方法作全血细胞测定中更为明显。
（4）溶血剂的加入量、溶血时间和仪器检测的清洁度有关，因此必须保持微孔的清洁，才能保证仪器测定的可靠性。原因：经EDTA―K2抗凝的全血标本，在采血30min后进行全血细胞分析，可提高结果的准确性。但需排除化疗、血小板减少性紫癜、白血病及造血系统异常等疾病。血小板形态不规则且细小，任何灰尘和斑点都会影响计数。反复使用的测定管极易引起杂质吸附，造成残余溶血素污染，从而引起PLT计数偏高。血细胞分析仪检测血小板的准确性取决于很多因素，环境、温度、抗凝剂混合情况以及所有影响电脉冲大小及数目的因素都会影响正确计数。因此，只有正确操作，排除各种干扰，才能使血小板的计数结果准确靠。
篇6
资料与方法
试剂和仪器：XT-1800i血细胞分析仪及其专用试剂，Olympus光学显微镜。
标本：静脉血2ml（EDTA-K2抗凝），均来自我院门诊健康体检。
结 果
检测前先做本底测定和质控，在允许范围内后，才能进行测试。
统计方法：用EXCEL对数据进行统计分析，用函数CORREL计算相关系数，差异用t检验。
精密度测定：批内精密度检测：选择高、中、低值3份标本，每份连续测定11次，第1次结果不用，统计后10次结果，计算各项目（WBC、RBC、HGB、PLT、HCT）的变异系数CV。批间精密度检测：中值质控品连续测定20天，然后计算上述各项目的变异系数CV，见表1和表2。
携带污染率检测：选取高、低值的WBC、RBC、PLT、HGB标本先连续测定高值标本3次（H1、H2、H3），再连续测定低值标本3次（L1、L2、L3），依据公式：携带污染率（%）=[（L1-L3）/（H3-L3）]×100，计算出各项目的污染率，见表3。
线性测定：参照NCCLS文件规定线性测定方法，随机选取高值全血标本，用生理盐水作倍比稀释10%、20%、40%、60%、80%、100%，然后在XT-1800i上进行测定，每份标本连续测量5次[1]，将均值计为测量值，然后将测量结果与各稀释浓度理论值作对比，分别并计算出各项目相关系数，见表4。
白细胞分类结果准确度检测：随机取100份标本，分别制备2张血片，由两名经验丰富的技师按照《全国临床检验操作规程》采用双盲法进行染色细胞分类[2]。每张血片计数200个白细胞（NE：中性粒细胞，LY：淋巴细胞，MO：单核细胞，EO：嗜酸性粒细胞，BA：嗜碱细胞），取均值计为结果。然后与XT-1800i分析仪的测定值进行比较，见表5。
讨 论
XT-1800i血细胞分析仪，其核心原理仍然是核酸荧光染色结合半导体激光以及流式细胞术。RBC/PLT检测采用电阻法和双鞘流检测，降低颗粒回流、侧向通过等不足。采用SLS-HGB法检测HGB，对于WBC值偏高的标本，可以彻底溶解WBC，避免对HGB比色的干扰。专用WBC/BASO和WBC/DIFF检测通道，提高了准确率，可以最大限度地较少幼稚细胞漏检的可能。
综上可知，表1显示批内CV值小于规定值，重复性好，表2 CV0.98，相关性好。表5中两组数据比较，P>0.05，可知XT-1800i血细胞分析仪在白细胞的分类方面与人工分类基本无差别，准确度高，但也有要注意的时候，特别是一些异常的细胞或者寄生虫，仪器结果可能有一定偏差，因此，当细胞计数值过高或者过低，散点图或直方图异常，异常 表1 XT-1800i血细胞分析仪批内精密度测定结果（%）报警等的时候，必须要求手工复片，并应制定相应的复检标准。
总之，通过检测XT-1800i血细胞分析仪的各项指标，该机器具有检测速度快，重复性好，携带污染率小，白细胞分类准确度高等优点，是一种性能优良的全自动血细胞分析仪，在实验室大批量标本检测时，有效地提高了效率和准确度，很好地满足实验室的工作要求。
篇7
由于血细胞分析仪的计数可受很多因素影响，不可能使每项参数都完全正确，所以进行血涂片镜检的重要作用不能忽视。使用血细胞分析仪时，应对每例患者都作血涂片镜检，从血涂片中细胞分布情况，可大致估计血细胞数，因而可对照血细胞分析仪计数是否正确，以保证计数质量。
1.1 对白细胞计数的复核 笔者曾遇一重症肝炎患者，血细胞分析仪计数白细胞异常增高，而血涂片中白细胞分布正常；后经手工计数，白细胞在正常范围，考虑可能是高胆红素血症干扰仪器计数所致。采用生理盐水洗涤，再重新计数，结果正常。由于同时作血涂片的检查，使错误得以及时纠正。血细胞分析仪对白细胞计数的干扰因素可有：巨大血小板、血小板凝块、有核红细胞、溶血素、工作温度等，造成白细胞假性升高或降低，故用血涂片进行复核很有必要。
1.2 对白细胞分类的复核 仪器对细胞分类是基本白细胞在加入溶血素后体积变化来区分，分类比较粗糙，只是一种过筛手段，与传统分类不同，传统手工分类是按基本细胞形态来分类的。目前，血细胞分析仪尚不能明确区分幼稚细胞、嗜酸性或嗜碱性粒细胞和单核细胞，也不能识别异型淋巴细胞等［1］。因此，进行镜检分类是必不可少的，它是保证细胞分类正确的基础。目前尚无一种自动化血细胞分析仪可以代替手工涂片。
1.3 血小板计数的复核 用血涂片进行血小板数复核，需要有丰富的经验，仔细观察血涂片中血小板的形态及分布，如血小板数量正常而形态不正常，可进一步作血小板功能方面的检查。如血小板数与仪器计数有出入，可能因素有：血小板凝集、细胞碎片、纤维蛋白、小红细胞(体积＜30 fL)、标本放置时间过长等，均可严重干扰血小板计数。
2 通过血涂片，并结合血细胞分析仪的各项参数及报警信号，可为临床提供有价值的资料
2.1 根据白细胞参数及直方图，结合血涂片检查分析，可发现更有价值的资料 当参数的直方图提示中性粒细胞数异常时，血涂片检查应特别注意中性粒细胞是否有形态异常，如核左移常伴有中毒颗粒、空泡变性，是否有原始和幼稚细胞等，如中性粒细胞5叶核以上者超过3%则为核右移，为造血功能衰退或缺乏造血物质所致。当参数和直方图提示中间细胞数异常时，血涂片检查就应特别注意嗜酸性、嗜碱性粒细胞和单核细胞的形态变化及其所占比例，注意是否有原始或幼稚细胞。在实际工作中也可发现，白细胞总数在正常范围内的白血病，如果不作血涂片检查，往往易漏诊。当直方图和参数提示淋巴细胞异常时，血涂片检查应特别注意有无异型淋巴细胞，有无原始和幼稚淋巴细胞等。
2.2 根据红细胞参数及直方图，结合血涂片，可为贫血的鉴别诊断提供有价值的依据，这时平均红细胞体积(MCV)均小于正常对照值，红细胞体积分布宽度(RDW)大于正常对照值。红细胞大小不均，大红细胞及巨红细胞易见到，生理性中心浅染区常消失，可见多色性及有核红细胞为巨幼红细胞性贫血，MCV和RDW均高于正常对照组。镜下见许多正色素性和低色素性红细胞则多见于缺铁粒幼细胞性贫血。以上各种原因的贫血均为造血原料不足或利用障碍引起。若见靶形红细胞，RDW为正常范围，则为地中海贫血。在溶血性贫血和再生障碍性贫血中，红细胞形态可大致正常，若易见嗜多色性红细胞，亦可见到有核红细胞，且RDW大于正常对照时，可推断为溶血性贫血；否则，可推断为再生障碍性贫血，并观察到粒细胞和血小板皆少。此外，镰形红细胞可见于血红蛋白S病，口形红细胞常见于遗传性口形红细胞增多症；脾切除患者的红细胞中可见多数棘细胞；在遗传性椭圆形红细胞增多症的血涂片中，椭圆形红细胞可在25%以上；红细胞碎片或不完整的红细胞，在弥漫性血管内凝血、微血管溶血性贫血、重型地中海贫血时出现较多。
3 血涂片镜检可检查寄生虫
篇8
随着科学技术的高速发展，血细胞分析仪在临床上得到了普遍应用。其速度快、易操作、功能强为临床提供了不同层次有效的血细胞参数，为血细胞计数的筛查方法。但由于其检测原理的局限性，使结果易受多种因素影响，血小板结果偏高是常见的问题。SYSMEX XT-1800i血细胞分析仪应用库尔特原理，采用电阻抗法进行细胞计数。当体积大小不等的血细胞通过仪器计数小孔时，引起小孔内、外电流和电压的变化，形成与血细胞数量相当，体积大小相应的脉冲变化，从而间接地区分出血细胞。血小板与红细胞计数区域常有交叉，体积偏小的红细胞其脉冲信号可能被视为血小板信号，造成血小板计数假性增高[1]。为了解电阻抗法小红细胞对血小板计数的影响，笔者按红细胞平均体积的大小分类，比较电阻抗法与显微镜法血小板计数的差异，现将结果报告如下。
1 资料与方法
1.1 一般资料 选择2011年5-11月本院门诊及住院的180例患者。按MCV大小进行分组，第一组MCV 70~81.9 fl，第二组MCV 60~69.9 fl，第三组MCV
1.2 仪器与试剂 血细胞分析仪：采用日本SYSMEX XT1800i全自动分析仪及原装配套试剂与质控物。手工法：双目显微镜，改良牛鲍计数板，试剂为1%草酸铵稀释液，按全国临床检验技术操作规程第3版配置[2]。
1.3 检测方法 在空腹状态下，抽取患者静脉血2 ml，加入含EDTA-K2抗凝剂的真空试管中，轻轻摇匀，在2 h内检测完毕。检测标本前，每日用仪器原装质控物做质控，保证仪器在控的前提下检测患者标本。仪器检测标本的同时进行显微镜计数，用毛细吸管抽取20 μl静脉血加入0.38 ml草酸铵稀释液中，摇匀后滴入计数板，室温静置后，经有经验的工作人员计数两次取平均值。
1.4 统计学处理 采用SPSS 10.0软件进行统计学处理，计量资料以(x±s)表示，采用t检验，以P
2 结果
MCV 70~81.9 fl时，仪器法与手工法比较差异无统计学意义(P>0.05)。MCV 60~69.9 fl时，仪器法与手工法比较差异有统计学意义(P
3 讨论
血小板检测是研究凝血与止血功能的重要指标之一，也是手术前必要检查的项目。临床上很多疾病都能引起血小板的增高，如慢性粒细胞性白血病、原发性血小板增多症、真性红细胞增多症。一些疾病还可引起血小板反应性增高，如急性化脓性感染、大出血、急性溶血、肿瘤等。因此，血小板检测结果的可靠性至关重要。
SYSMEX XT-1800i全自动血细胞分析仪采用电阻抗原理，根据颗粒的大小来区别细胞，与颗粒的性质无关。红细胞和血小板同在一个检测通道，仪器把2~30 fl范围的细胞判定为血小板，而将25~250 fl范围的细胞判定为红细胞，因而红细胞与血小板之间存在计数的交叉区域。当红细胞体积正常时，与血小板体积悬殊很大，不会干扰血小板计数。红细胞体积偏小时，仪器会将小红细胞误认为血小板，使血小板假性升高。而且MCV越小，对血小板计数影响越大，血小板计数假性增高就越多[3]。临床上最常见的小细胞性贫血有缺铁性贫血、地中海性贫血。红细胞分布宽度(RDW)是红细胞体积异质性参数，反应红细胞体积大小不一致的程度。MCV 70~81.9 fl，RDW异常时，小红细胞比例增加，血小板假性升高。当患者标本中的小红细胞增多时，血小板相应参数PDW、P-LCR、PCT不出结果，仪器报警提示血小板分布异常，直方图右侧抬高，不与横坐标重合甚至平行，呈拖尾状，这是因为小红细胞的脉冲被误认为血小板，而体积又比血小板大的原因[4]。
综上所述，电阻抗法检测血小板时，容易受小红细胞干扰。在实际操作过程中，检验人员应掌握仪器的原理，观察图形及报警，出现MCV小于70 fl或MCV在70~81.9 fl之间而RDW大于14.5%时，应及时显微镜复检，减少血小板计数误差，提高检验结果的准确性和可靠性。
参考文献
[1] 胡前平.小红细胞对血小板测定的影响[J].检验医学与临床，2006，3(9)：480.
[2] 叶应妩，王毓三，申子瑜.全国临床检验操作规程[M].第3版.南京：东南大学出版社，2006：136-137.
篇9
1.液路故障
1.1 WBC计数偏低且不分类。
故障现象： WBC 计数结果偏低 WBC/BASO 不分类。后来 WBC 计数为“0”，WBC/DIFF ，WBC/BASO 通道均不分类。两个通道的粒子数均为“0”
故障分析和处理：首先考虑液路问题，因为就只有白细胞通道计数和分类不正常，其他通道的参数正常，所以只考虑WBC。通过观察发现在计数的过程中有血液进入DIFF BASO 池中。说明前端没有问题，接着考虑DIFF BASO池到流动室的这段管路。检查流动室后的SV6 阀是否有液体流出。拔掉SV6 阀到WC2池的这段管路后有液体从SV6 阀流出，观察SV6 阀后面的液路和WC2 废液池非常的脏，用探头清洗液从管路向WC2 池里面打液体把管路打通，再将流动室、样本针对应的液路清洗。做样本发现WBC 有计数也有分类，但是WBC 计数结果还是偏低0.3-0.5。怀疑有地方没有洗干净，然后进行两遍整机探头液浸泡，仍然无好转。最后怀疑是SV6 阀的问题，更换SV6 阀后结果正常。
1.2 HGB故障
故障现象：做空白就报警HGB 故障。
故障分析和处理：拆开屏蔽壳观察，发现每次在加入稀释液后都会产生大量气泡，这些气泡很快会消失。分析认为，这些气泡应该是造成HGB 本底电压偏低的原因，因此检查了LH 及稀释液的加入，从试剂瓶到计数池的管路未发现异常，更换相关的阀无效。观察HGB 池内的情况，发现每次稀释液的加入都是一滴滴滴下去，不是一条水柱加入，发现稀释液加入HGB 池的特氟龙管没有在HGB 池中露出头来，怀疑管子内的液体在池子上的接插处与其产生了干涉，造成液体不能直接加入HGB 池。将管子上的硅胶套管去掉，手动将特氟龙管末端伸出接插处，试剂加入时不再产生大量气泡，空白正常。
1.3预混池溢液
故障现象：机器底部靠近自动进样器右后端有液体不断渗出来，机器在做样本是没有液体露出。
故障分析：液体加入过多；液体排不净。
处理过程：发现预混池以下全部有液体，且预混池满，判断液体从预混池上端溢出。服务-维护中找到排空/灌注，在取消休眠的情况下排空预混池，发现废液排出很迅速并且很干净，排出废液排出的问题。做样本的时候无漏液的情况，排空液路后等待了一会，发现预混池内液面渐渐上升，大概10分钟开始溢液，确定是预混池加液体过多。预混池的液体是从DIL 池过来的稀释液，有2 条路径，一条是通过预混池后端-分血阀-SV23——DIL 池，一条是通过预混池上端-分血阀-SV5-SV22—DIL池。没有发现上端有液体滴下，极有可能是从后端漏进来的稀释液。将SV22 与SV23 阀予以调换，预混池上端开始有滴液，证明了SV23 阀已经关闭不严，所以才出现此现象，更换阀门后故障消除。
2.机械故障
故障现象：自动进样偶发掉管。
处理方法：打开前面板，取出试管夹上的试管，把试管架从自动进样器上取出，然后消除故障，从新开始测试。偶尔有试管掉落到机器内部，需要用镊子取出来。怀疑试管夹夹着试管在上下气缸运动的时候，试管在试管夹上晃动，导致试管倾斜，不垂直，决定打开前面板调整混匀组件位置，向机器内部整体移动，经过了多次调整移动，一次移动一点，调试观察，做血样观察，最后，观察放置试管时，试管与试管架孔位没有擦碰，放置位置在试管架孔位中心，做血样，认为机器状态正常，良好，恢复机器后观察。
3.数据管理软件联机故障
故障现象：连接上机器后，机器端无报警，连接管理程序提示机器已连接，但是机器做完的数据无法传到数据管理软件端，从连接管理程序查看也没有数据传过来。
故障分析、处理过程：软件在刚开始时正常，只不过因为反复备份数据，D 盘空间不足，删除多余的AUTOBACKUP 文件，重新安装软件后，端口设置为5500；IP 设置为192.168.0.1，发现协议设置的是HL7，但是协议应该设置为15ID，问题出在协议设置上，将协议设置为15ID 后，一切正常。
4.仪器保养
每个工作结束后关机，通过吸入清洗液，仪器自动进行排空和清洗工作在连续使用的情况下，至少需每24h进行一次关机动作， 保持仪器管路的清洁。去除贮存池的液体、清洗手动进样清洗杯、清洗样品旋转阀槽、清洗进样槽，去除WBC 凝块，对WBC 检测孔进行清洗，清除流动室气泡及对学检测部件的流动室的清洗等。[2]分析仪每运行一个月左右，需要清洗开放采样部件，自动采样部件，并请执行探头清洁液维护，需用探头清洁液清洗分血阀、流动室、RBC池等组件或清洗整机；当分析仪每运行两个月左右，请手工清洗分血阀。
BC5800全自动血液分析仪外形美观流畅，视觉效果较好；全中文工作界面，异常信息提示明确，解决方法一目了然；该仪器适应大中小医院检验部门的需要，是一款较理想的全自动五分类血液分析仪。[3]
参考文献：
篇10
1 资料与方法
1.1 一般资料 研究抽取我院2013年4月份收治的1例男性支原体肺炎患者作为研究对象，年龄33岁，经血常规检查显示红细胞及其相关参数存在异常，后经血涂片镜检，确认该患者存在红细胞凝集。
1.2 仪器及试剂 选用日本光电公司生产的MEK-7222K全自动血细胞分析仪及其配套试剂。
1.3 方法 在患者肘部采集约2mL静脉血，并置入EDTA-K2真空抗凝管内抗凝，37℃水浴期间检验20次，前后各10次；主要对HB、PLT、WBC、RBC、HCT、MCV，以及MCH和MCHC等几种参数进行检验。
1.4 统计学分析 研究应用SPSS16.0统计软件对数据进行分析和统计，计量材料采用（χ ±s）形式显示，组间对比应用t检验，以P
2 结 果
经研究发现，水浴前后的HB、PLT和WBC检验结果比较，差异不具备统计学意义（P>0.05）；而RBC、HCT、MCV、MCH和MCHC等水浴前后的检验结果比较，差异则存在统计学意义（P
3 讨 论
红细胞冷凝集综合征属于较为常见的一类自身免疫性病症，在血液温度下降到一定程度时，血液循环当中的自身抗体IgM、IgG及IgA等便能够与红细胞抗原进行结合，导致该疾病出现[2]。据有关资料显示，温度的高低会影响到红细胞形成血凝块的速度，这种现象在30℃以下温度时尤为明显，而当温度提高后，凝集消失[3]。在37℃水浴时，红细胞可通过改变温度来实现自动解聚或凝集，具有可逆性。在机体患病后，存在于人体血清中的冷凝集素便会在低温下与红细胞进行凝集，给血细胞分析仪的检验结果造成影响。在本组研究中，发现水浴前后的HB、PLT和WBC检验结果比较，差异不具备统计学意义（P>0.05）；而RBC、HCT、MCV、MCH和MCHC等水浴前后的检验结果比较，差异则存在统计学意义（P
经本研究表明，红细胞冷凝集会给全自动血细胞分析仪的检验结果带来相当程度的影响，临床需要予以足够重视，以提高检测结果的准确性。
参考文献
篇11
实验室环境温度决定了仪器、试剂以及标本的温度,计数时稀释液的温度应为( 22±4) ℃ 。当稀释液的温度低时,红细胞溶解后的膜碎片聚集, 粒度分布曲线的平坦段变短,当试剂温度低于18 ℃时需加热使用。有些溶血剂在低温时可出现结晶, 并不容易被察觉,很难引起操作者的注意,但在显微镜下, 可见到其中悬浮着许多细小的结晶,这样的溶血剂滴入血液中,白细胞计数必然增高。我们基层医院地处北方，这种情况在实际操作中时有发生,尤其是在冬季。血细胞分析仪分析不出稀释液在低温时产生的聚合结晶，常使分析结果出现异常。在临床中可以将溶血剂或稀释液进行加热，以升高温度, 消除结晶。还可加入适量的非离子表面活性剂,从而减轻溶血剂结晶的发生。低温也易激活血小板,引起血小板凝集, 造成血小板计数假性降低。
2 抗凝剂的影响
ABX60血液细胞分析仪检测EDTA-K2 含量不同的静脉血,临床结果表明EDTA-K2 有效抗凝剂量在1.5~ 6. 0mg/ mL时,不影响分析结果。自制抗凝瓶EDTA-K2 用量1.5~ 2.2mg/ mL为宜。低于1. 5mg/mL时抗凝效果欠佳, 出现肉眼不易发现的凝集,可表现为血小板降低。在采血时，一般2mL的采血量,其误差在± 0. 5mL范围内的话比较适宜。血量过多或过少都会对结果造成影响,血量过多抗凝不充分,会出现凝块;血量过少, 会导致抗凝剂过浓。笔者分析认为，由于血细胞遇抗凝剂先有一个短暂的(1~ 2min) 收缩过程, 这是因为钾离子进入血浆以后,改变了渗透压,导致水从细胞内流出所致。随后细胞将钾离子泵进膜内,细胞又恢复原态。绝大部分患者的标本这一时间只需要几分钟, 但也有人需要20~ 30 min。抗凝剂过浓会延长这个平衡时间。
3 标本放置时间的影响
笔者通过观察总结，发现标本存放3~ 6 h对多数血液分析参数均有不同程度的影响, 主要影响WBC和PLT 结果。但有部分标本在放置的8h内大部分参数没有显著改变， 而平均血小板体积、血小板分布宽度、大血小板比率和血小板压积在2h内却有明显增高。笔者认为，标本放置时间过长会导致细胞分层, 分层的细胞会产生不同的代谢物,形成微环境,此时, 细胞的体积与其周围的微环境相适应, 重新混匀后需重新建立平衡, 最初的1~ 2min收缩,达到平衡约需30min。这一现象对血脂较高的标本影响更为显著。
测定时间对血小板的影响更为显著,在一定的时间段内, 随着时间的延长, 抗凝剂与血液充分溶融, 松散聚集的血小板逐步解聚,血小板数值逐步升高。实际操作中, 由于急需报告结果(尤其是急诊标本) 而使待测时间缩短, 往往导致血小板计数结果偏低。
4 生理和病理因素的干扰
在临床实践中,笔者有时会发现应用血细胞仪对新生儿血液进行分析时,使用正常量溶血剂计数白细胞, 各项结果与实际有差异。笔者认为, 由于新生儿处于特殊的生理缺氧状态,其红细胞数和血红蛋白都高( Hb> 200g/ L)。常规溶血剂用量不能将红细胞完全破坏, 加大溶血剂用量, 可以使白细胞正确分类, 计数准确。因此, 在新生儿血液分析中掌握好溶血剂用量是获得可靠结果的关键。
病理因素也可影响血液分析的结果, 在某些疾病的影响下,当平均红细胞体积小于70fL时,血小板计数假性升高, 这时需用显微镜人工计数才能得到准确的结果。
篇12
结论：网织红细胞及其参数的变化可以更敏感的反应骨髓的造血功能，可作为化疗患者监测骨髓功能的重要指标。
关键词：化疗网织红细胞骨髓抑制
【中图分类号】R4【文献标识码】A【文章编号】1008-1879（2012）12-0022-02
肿瘤患者在接受大剂量的化疗药物治疗后，骨髓功能的抑制，可导致白细胞、血小板、红细胞生成减少，导致感染、出血和贫血。过去一直将白细胞、血小板计数作为反应化疗患者骨髓功能的观察指标，但由于这些指标容易受到机体感染、其他治疗的影响，有时结果不能准确反应骨髓造血功能是实际情况。网织红细胞是介于成熟红细胞和晚幼红细胞的中间状态，略大于成熟红细胞，细胞胞浆内尚含有一定的嗜碱性RNA，经碱性染料（天青B、煌焦油蓝、新亚甲蓝）活体染色后，在胞浆内可看到蓝色的点状或网格状的结构。
网织红细胞计数过去常作为某些贫血的筛选指标，随着血细胞分析仪、流式细胞术定量分析等自动化分析仪器的发展，为网织红细胞计数提供了更先进的检测手段和更多的参数。其中网织红细胞百分比（RET）、中荧光强度网织红细胞百分比率（MFR）、高荧光强度网织红细胞百分比率（HFR）等参数，被认为能够反应骨髓造血活性，且其敏感性高于白细胞、粒细胞和血小板计数，并不受感染、治疗的影响[1-3]。本文对50例化疗患者不同时期的网织红细胞、各种血细胞计数等参数进行检测分析，以探讨网织红细胞计数等参数判断化疗患者骨髓功能的临床意义。
1材料与方法
1.1一般资料。本组资料来源于2011年1月至2011年12月间我院收治的50例各类恶性肿瘤化疗患者。其中男性31例，女性19例；年龄15-69岁，平均（42.8±17.6）岁。患者的恶性肿瘤诊断均经过病理组织学或细胞学检查确诊，包括肺癌16例，胃癌6例，食管癌5例，卵巢癌3例，乳腺癌8例，宫颈癌7例，非霍奇金淋巴瘤5例。50例患者均进行药物化疗，化疗方案采用CAP、NP、TP、GP、FAC、CHOP、ABVD等。
1.2实验材料。日本东亚Sysmex公司XE-2100全自动血细胞分析仪，原装进口配套试剂，高、中、低3种浓度的标准全血细胞质控品，EDTA-K2抗凝管。
1.3研究方法。每位患者均在严格无菌操作下采集外周末梢血，EDTA-K2抗凝，专用真空管保存，Sysmex XE-2100全自动血细胞分析仪检测，于2小时内完成测定。检测内容包括网织红细胞百分比（RET）、中荧光强度网织红细胞百分比率（MFR）、高荧光强度网织红细胞百分比率（HFR），WBC。标本的采集开始于化疗前空腹1次，化疗开始后第3、7、10、14、21天，检测上述指标。WBC的参考范围4.0～10.0×109/L，网织红细胞0.5%～1.5%，MFR、HFR分别为7.16%～15.44%、0.87%～4.33%。
1.4资料的统计。患者均建立统一的就诊病历，项目齐全，数据真实可靠。对患者的病例资料进行的观察，并按试验设计的要求，制定患者指标的观察量表，其中包括：患者的姓名、性别、年龄、临床诊断、化疗方案、WBC、RET、MFR、HFR等项目，以上内容由经过专业化培训的人员进行记录、统计与分析。
1.5统计学处理。所用结果均采用SPSS16.0软件进行统计学分析，均数采用t检验，率采用X2检验分析，当结果P
2结果
2.1患者化疗前后各时段不同参数间的比较。化疗后患者的骨髓造血功能明显受到抑制，WBC、RET、MFR、HFR于化疗后第3天开始降低，到化疗后第10天，RET、MFR、HFR降至最低，差异有统计学意义（P0.05）。骨髓造血功能恢复时，MFR、HFR的升高早于WBC、RET，见表1。
2.2患者化疗后最终发生IV骨髓抑制的比较。骨髓抑制的分级按世界卫生组织抗癌药物急性及亚急性毒性反应分度标准。WBC：0°≥4.0×109/L，Ⅰ°3.0～3.9×109/L，Ⅱ°2.0～2.9×109/L，Ⅲ°1.0～1.9×109/L，Ⅳ°
注：RET（%）>0.3的化疗患者发生Ⅲ°～Ⅳ°骨髓抑制的概率与RET（%）≤0.3的化疗患者发生Ⅲ°～Ⅳ°骨髓抑制的概率相比较，差异有统计学意义（P
3结论
化疗是治疗恶性肿瘤的常用方法，大剂量的化疗药物在快速杀死肿瘤细胞或抑制肿瘤细胞生长的同时对机体内正常组织，尤其是增殖旺盛的细胞也具有杀灭或抑制作用。绝大部分的化疗药物对骨髓有不同程度的抑制作用，骨髓的造血功能受抑制后，可导致外周血粒细胞、淋巴细胞、血小板、血红蛋白减少，导致机体免疫力、凝血功能降低，增加了各种病原感染、出血的机会。骨髓各种造血细胞的减少，其速度的快慢与细胞的半衰期密切相关。白细胞、血小板计数由于方法简便、快速，过去一直作为反应化疗患者骨髓功能的观察指标，但由于这些指标容易受到机体感染、其他治疗的影响，有时结果不能准确反应骨髓造血功能是实际情况。
网织红细胞是介于成熟红细胞和晚幼红细胞的中间状态，能够反映红细胞的成熟情况，也是判断骨髓的红细胞造血功能。随着血细胞分析仪、流式细胞术定量分析等自动化分析仪器的发展，为网织红细胞计数提供了更先进的检测手段和更多的参数。RET、MFR、HFR等网织红细胞参数，被认为能够反应骨髓造血活性，且其敏感性高于白细胞、粒细胞和血小板计数，并不受感染、治疗的影响。
本研究中化疗后患者的骨髓造血功能明显受到抑制，WBC、RET、MFR、HFR于化疗后第3天就开始逐步下降，差异有统计学意义（P
化疗药物导致的骨髓抑制目前尚无有效的预防和治疗方法，出现Ⅲ°～Ⅳ°骨髓抑制时，患者容易发生感染、出血等并发症，必须进行干预治疗。找到一种敏感而可靠的指标，及时反应骨髓的功能变化，指导临床合理用药，减少各类并发症的发生，具有重要的临床价值。本研究中患者化疗后第10天RET降到最低水平，RET>0.3的化疗患者发生Ⅲ°～Ⅳ°骨髓抑制概率为18.8%，RET≤0.3的化疗患者发生Ⅲ°～Ⅳ°骨髓抑制概率为77.8%，RET>0.3的患者发生Ⅲ°～Ⅳ°骨髓抑制的概率远低于RET≤0.3的化疗患者（P
综上，肿瘤患者在化疗期间，联合检测RET、MFR、HFR等网织红细胞参数在评价骨髓造血功能时更敏感，更直观，对预测Ⅲ°～Ⅳ°骨髓抑制要一定的价值，指导临床评价化疗药物的骨髓抑制作用，方便医师及时的调整用药方案。其检查方法简便、快速，结果可靠，具有良好的推广价值。
参考文献
篇13
关键词 血细胞分析仪；血标本保存条件；检测准确性
血细胞分析仪的广泛应用为提高检测结果的准确性、治疗方法的针对性和合理性发挥了积极的推动作用。但在实际工作中，难免会出现血液标本无法及时送检的情况，若保存不当，势必会对检测结果的准确性产生负面影响。为此，本次研究围绕不同保存条件对血细胞分析仪检测结果的影响展开分析和讨论，现将研究过程报告如下。
1 材料与方法
1.1 仪器与试剂
采用日本Sysmex 公司的SF-3000 全自动血细胞分析仪及配套试剂，仪器在试验前已经过校准。
1.2 方法
1.2.1 标本采集
抽取健康志愿者的静脉血30ml，将其注入含有50mg EDTA-2K 的烧瓶（已硅化）混匀抗凝，即刻上机。按1ml/ 支的规格将血液分别置入27 支试管并加塞盖紧，随后平均分为3 组，分别置于4℃、20℃、30℃的条件下保存。在采血后的1、2、4、6、8、12、24、48、72h 这9 个时间点，分别从三组中取出一支试管进行血细胞分析。
1.2.2 分析方法
设备预热30min 后即开始测定（保存条件为4℃的标本取出后需在室温下平衡10min），每支标本进行两次平行测定，取各参数均值打印并进行分析。每日使用质控物对仪器进行检测，以确保血标本检测结果的准确性不会受到来自仪器因素的影响。
1.3 评价标准
依据仪器对标本检测的精密度，以标本在室温（20℃）条件下放置1h 时的测定结果作为基准，将其余时间点的测定结果与基准值进行比较。以白细胞参数变化率>3%、红细胞参数变化率>2%、血小板参数变化率>5% 为有意义。
2 结果
2.1 白细胞参数变化情况
白细胞计数（ 下简称WBC） 在48h（4℃）、24h（20℃）、8h（30℃）的测定值以及白细胞分类在12h（4 ℃）、8h（20℃）、4h（30℃）的测定值基本稳定，参数变化率<3%。其余各时间点3 组血标本的WBC 水平均表现出下降趋势，在20℃、30℃的变化更点图上，各细胞群的散点开始分散，散间分区混乱，报警增多。
淋巴细胞、单核细胞比例表现出上升趋势，中性粒细胞比例表现出下降趋势。
2.2 红细胞参数变化情况
除始终处于稳定状态的血红蛋白（下简称HGB）外，其余参数均受到来自温度因素的影响。保存条件为4℃的血标本，红细胞值（下简称RBC）、红细胞平均体积（下简称MCV）、红细胞比容（下简称HCT）在48h 内的测定值基本稳定，变化率<2%。48h 后，MCV 与HCT 的测定值表现出轻微的上升趋势。保存条件为20℃的血标本，RBC（48h 内）、MCV、HCT（12h内）的测定值基本稳定，变化率<2%。保存条件为30℃的血标本，RBC（24h 内）、MCV、HCT（8h 内）的测定值基本稳定，变化率2%。
MCV 在12h 后（20℃）、8h 后（30℃）的测定值呈现出迅速提升的趋势，HCT 的测定值随MCV 的升高而升高。在72h 时，RBC 在三种保存条件下的测定值均出现不同程度的下降，其中，30℃条件下的下降幅度最大，究其原因，可能与MCV 明显升高、红细胞膜发生破裂有关。
2.3 血小板参数变化情况
血小板值（ 下简称PLT） 在48h 内（4℃）、24h 内（20℃）、12h 内（30℃）的测定值基本稳定，血小板平均体积（下简称MPV）在4℃（8h 内）、20℃（6h 内）、30℃（4h 内）的测定值基本稳定，变化率<5%。其余各时间点3 组血标本的PLT 水平均表现出上升趋势，尤以20℃、30℃条件下的表现最为突出。与此同时，MPV 也呈现出快速上升的趋势，在24h 时间点，4℃条件下的变化率为14.1%、20℃条件下的变化率为25.7%、30℃条件下的变化率为34.6%。
3 讨论
本次研究的结果显示，在应用血细胞分析仪的过程中，所使用的抗凝血标本最佳保存温度为4℃。若于室温条件（20℃）下保存，应于8h 内完成血标本的检测操作。若环境温度≥ 30℃，应于4h 内完成血标本的检测操作。即在日常工作中，若由于某些原因限制而不能立即完成血标本的送检，应尽可能将标本放置在4℃的温度环境下保存，如果条件不允许，则应将其放置在20℃的温度环境（有空调的室温条件）下保存，以免对血细胞分析仪检测结果的准确性产生负面影响。
需要注意的一点是，不同厂商生产的血细胞分析仪对于WBC的检测原理不同，因此在实际操作的过程中，应针对所采用的分析仪类型对最佳保存条件进行确认，切忌生搬硬套。